Abstract:
Este trabajo de investigación surge por la necesidad de desarrollar nuevas
tecnologías para el control vectorial de enfermedades tropicales. La enfermedad de
Borreliosis, causada por la bacteria Borrelia turicatae, presenta síntomas muy parecidos a
los presentados por otras enfermedades. Esto complica el diagnóstico de la enfermedad y
resulta en una subestimación de la incidencia reportada. Actualmente no existe un método
estándar para el diagnóstico de la Borreliosis. Por lo tanto, en este trabajo se trata de
estandarizar un método de producción y purificación de una proteína recombinanate BipA
de B. turicatae. Actualmente no existe un método estándar para el diagnóstico de la
Borreliosis, dado esto es necesario desarrollar pruebas diagnósticas para la enfermedad.
Por lo tanto esta investigación transformó una cepa especializada de E.coli (BL21(DE3))
y plásmido pET-19B para producción de proteínas recombinantes GlpQ de Borrelia spp. y
BipA de B. turicatae. Las bacterias transformadas fueron inducidas y luego, partir de
optimización de metodología de lisado, se eligió el lisado enzimático para aumentar
rendimiento de liberación de proteína recombinante. Posteriormente se purificó BipAr
marcada por histidinas mediante columnas de níquel HisTrap FF (General Electric). Se
analizó el rendimiento mediante espectrofotometría 280 nm y la estabilidad en presencia y
ausencia de un inhibidor de proteasas (PMSF 1 mM) en la fracción eluida. Se determinó
que la estabilidad de la proteína durante el procedimiento de lisis y purificación mejora con
la adición de PMSF. La concentración de la proteína purificada fue de 0.1107 mg/ml. Se
concluye que la proteína BipAr fue purificada exitosamente.
Por otro lado, la enfermedad de malaria es causada por el parásito del género
Plasmodium transmitido por la picadura de mosquitos del género Anopheles. En Guatemala
esta enfermedad ha sido controlada recientemente con la distribución masiva de pabellones
impregnados con insecticidas; pero la eficacia de este método de control está disminuyendo debido al surgimiento de resistencias. El presente trabajo de investigación describe la
optimización de métodos para desarrollar una nueva tecnología de control vectorial de
malaria, basada en la producción de machos estériles de An. albimanus. Se logró clonar el
inserto del gen BOL y del gen ZPG en las cepas de E. coli y se determinó que los insertos
no son estables (son tóxicos e inducen reordenamientos en el plásmido pGEMT-AmpRBOL/
ZPG). El método de alimentación para larvas de An. albimanus conteniendo E. coli
expresando ARNdh de Arabidopsis thaliana, permite el desarrollo larvario adecuado y no
interfiere con el tiempo de eclosión de pupa a adulto ni con la ovipostura. Se encontró que
existe más de una pareja de oligonucleótidos de genes control y de espermatogénesis que
podrían ser utilizados para monitorear la expresión de los genes BOL y ZPG a través de
electroforesis en gel de agarosa con bromuro de etidio o PCR tiempo real. El mejor
oligonucleótido de genes control para el monitoreo en larvas y pupas de An. albimanus es
AaRpS7, mientras que para el monitoreo en adultos el mejor es AaRIB43A2. Se puede
decir que el método de alimentación para larvas de An. albimanus con bacteria transgénica
sí puede utilizarse en estudios posteriores para evaluar efectividad del silenciamiento de
genes a través del fenotipo y cuantificación de reducción de expresión con PCR tiempo
real. Sin embargo, es necesario seleccionar regiones más cortas de los genes BOL y ZPG
para clonar en las cepas de E. coli. Posteriormente, se podría extrapolar la tecnología para
otros genes y otras especies de mosquitos que presenten dichos genes.